一、猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治（论文文献综述）
李兴海[1]（2019）在《PCV2、PRRSV、APP在生猪育肥期的共感染研究》文中提出PCV2和PRRSV能引起动物机体免疫抑制,猪在育肥期感染PCV2和PRRSV,导致机体抵抗力下降与肺部损伤,容易继发APP的感染。APP在呼吸系统增殖过程中释放Apx毒素,会加重猪的肺细胞损伤,可导致猪的急性死亡。ApxIVA是Apx毒素的一个结构蛋白,通过GenBank中ApxIVA全基因ApxIV-N′端设计引物、构建重组质粒、表达、纯化得到了ApxIVA-N-2抗原蛋白,并构建ApxIVA-N-2间接ELISA方法。通过不同阶段的猪血清检测,能够客观地反映APP群体抗体消长规律及感染情况。根据相关生产与免疫背景,用PRRSV-N、PCV2-Cap、APP-ApxⅣ间接ELISA方法,对五个（A、B、C、D、E）规模化猪场进行三个病原场内血清学调查。结果显示:（1）PRRSV在A、D、E三个场在产房、保育阶段就感染PRRSV,平均S/P值在2.5以上;B、C两个场的生长猪在育肥前期感染PRRSV,平均S/P值在2.0左右。（2）PCV2在A场母源抗体可以维持到150日龄;B、C两个场可以维持到90125日龄;D、E可以维持到4560日龄。（3）A、B、C、D、E五个猪场APP感染日龄大多在90120日龄之间与临床发病情况相符。在B场选定45日龄、60日龄的各100头保育猪加免PCV2做为试验组,未加免的猪为对照组,结果显示:（1）PRRSV不管是在45日龄还是60日龄的试验中,没有表现出正相关或者延迟对PRRSV感染的积极作用;（2）加强PCV2免疫对该病的保护有积极作用,并且60日龄比45日龄加免PCV2疫苗效果更好;（3）ApxⅣ检测说明PCV2试验猪比对照猪能够耐过APP的攻击并能产生高特异性抗体。
王艳[2]（2018）在《猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治》文中研究指明猪瘟与猪传染性胸膜肺炎是生猪养殖行业遇到的重要问题,由于两者可以混合感染,一旦发病,扩散速度非常快,如果得不到有效诊断和治疗,则会给养猪户造成严重的经济损失。因此,针对两种病情的混合感染情况进行分析,并提出相关的诊断和治疗措施。
韦堂康,谢家卫[3]（2013）在《猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的病症介绍》文中进行了进一步梳理猪瘟是一种由滤过性病毒引起的急性、热性、高度接触性传染病。猪传染性胸膜肺炎以呈现胸膜炎症状和病变为特征。两者混合感染,会导致极高的发病率、死亡率。鉴于此,本文对猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的症状表现、病理变化、病理诊断及应急措施进行了阐述,旨在为广大的养殖户防范此疫病提供参考和借鉴。
刘丽萍,王守君,单艳君,朱永信,张玲,张谦[4]（2011）在《猪高热病的诊断与防治》文中研究指明猪高热病是由高致病性蓝耳病等病毒和细菌、寄生虫等多种病原混合或继发感染引起的急性、热性、高致病性和致死性的传染性疾病。近年来,猪高热病在不少地方经常发生,尤其是高温高湿夏季。
刘翠权[5]（2011）在《广西395个规模猪场猪呼吸道疾病综合征的病原学调查及防控措施》文中研究说明猪呼吸道疾病综合征（PRDC）是一种多因子疾病,它是由病毒、细菌、支原体、寄生虫、不良的饲养管理条件及易感猪群等综合因素相互作用引起的疾病综合症。为了解该病在广西猪群中的感染状况,主要采用PCR和RT-PCR方法,结合细菌分离鉴定,2007年5月至2009年5月,对广西14个市395个规模猪场的1686份组织样品分别进行了12种病原检测。结果显示：292个规模猪场和1212份样品为PRDC阳性,猪场和组织样品的阳性率分别为73.92%（292/395）和71.89%（1212/1686）。其中,单独或者混合感染猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）、猪圆环病毒2型（PCV2）、猪瘟病毒（CSFV）、猪链球菌（SS）、猪伪狂犬病毒（PRV）、支气管败血波氏杆菌（Bb）、猪流感病毒（SIV）、猪附红细胞体（E-suis）、产毒素多杀性巴氏杆菌（T+PM）、副猪嗜血杆菌（HP）、猪细小病毒（PPV）和猪传染性胸膜肺炎放线杆菌（APP）的阳性样品分别为51.36%（866/1686）、36.54%（616/1686）、10.91%（184/1686）、9.19%（155/1686）、6.76%（114/1686）、6.64%（112/1686）、5.81%（98/1686）、5.63%（95/1686）、4.45%（75/1686）、3.91%（66/1686）、0.59%（10/1686）和0（0/1686）。1病原学分析从感染的类型看,在1212份阳性样品中,单独感染的样品351份,占28.96%（351/1212）；混合感染的样品861份,占71.04%（861/1212）。从混合感染的类型看,在861份混合感染阳性样品中,二重混合感染597份、三重混合感染210份、四重混合感染54份,分别占69.34%（597/861）、24.39%（210/861）和6.27%（54/861）。从混合感染的微生物种类看,在861份混合感染阳性样品中,“病毒与病毒”混合感染的样品460份、“病毒与细菌”混合感染的样品401份,分别占53.43%（460/861）和46.57%（401/861）。从感染的优势病原分析,PRRSV和/或PCV2感染的样品1054份,占1212份阳性样品的86.96%。其中,"PRRSV+PCV2（+其它病原）”混合感染的样品428份,占所有861份混合感染样品的49.71%。结果表明：广西规模猪场普遍存在PRDC, PRRSV、PCV2是引起PRDC的主要病原；感染类型复杂多样,混合感染相当普遍,以"PRRSV+PCV2（+其它病原）”混合感染最为常见。2病理组织学观察在病原学调查的基础上,对560个PRDC病例的心、肝、肺、肾、脾、淋巴结等组织器官进行石蜡包埋、切片、H.E染色,光学显微镜下观察其病理组织学特征。560个中的500个（占89.3%）,其中,PRRSV单独感染病例166个、PRV单独感染病例22个、PRRSV+PCV2混合感染病例247个、PCV2+PRV混合感染病例38个、PRRSV+E-suis感染病例21个、PRRSV+CSFV+PCV2+HP感染病例6个,其心、肝、肺、肾、脾、淋巴结等组织器官的病理组织学变化呈现以下特点：PRRSV单独感染的病例,肺主要表现为间质性肺炎,肾表现为肾小球肾炎,淋巴结表现为急性增生性淋巴结炎,肝脏表现为变质性肝炎,心肌表现为变质性心肌炎,脾表现为脾小体体积缩小、坏死,红髓区内出血,淋巴细胞减少；PRRSV和/或PCV2混合感染其他病毒或继发细菌感染时,病变更加典型,组织细胞发生变性甚至坏死。系统的病理组织学观察为进一步形成PRDC的病理组织学诊断技术规范提供重要参考依据。3防控措施2009年5月开始,对15个试验猪场采取综合防控措施。这些措施主要包括：对必须进入猪场的人员、车辆、物品随时进行消毒,对猪舍地板、墙壁、天花板、空气、用具等定期进行消毒；做好PRRSV、CSFV、PRV、SIV、PCV2等PRDC原发性病原的免疫和监测,对抗体水平不合格的及时进行强化免疫;做好环境虫鼠蚊蝇等生物灾害防范和通风、温度、湿度控制；加强饲养管理,做到全进全出、养殖密度合理、营养均衡；尽可能减少猪群转栏、混群、免疫次数,净化养殖周边环境,减少应激；对病猪及时隔离并投喂敏感药物,防止继发感染；对死猪及其污染的物品及时进行无害化处理和消毒。重点措施是消毒、监测和对病死及带毒猪的隔离、淘汰、无害化处理,主要内容包括：对必须进入猪场的人员、车辆和物品随时进行消毒；对产房、保育猪舍、生产育肥猪舍的地板、墙壁、天花板、用具等分别进行2次/周、1次/周、2次/月的常规消毒,空栏后进猪前进行2次全面消毒；对产房、保育猪舍的空气在空栏后进猪前进行1次密闭熏蒸消毒；对猪舍外环境进行2次/月的消毒；对病猪和带毒猪及时隔离、淘汰,对死猪及其污染的物品及时进行无害化处理和消毒。4防控效果采取综合防控措施后,猪瘟的免疫抗体合格率明显提高,猪瘟、猪繁殖与呼吸综合征、猪伪狂犬病、猪圆环病毒2型感染和猪流感的病原学监测的平均阳性率均不同程度地下降。2009年5月至2010年6月,共监测15个规模猪场血清样品16974份、病原学样品1589份。其中,猪瘟免疫抗体的平均合格率由试验前的91.18%提升到试验后的95.90%,病原学样品的平均阳性率由8.55%下降到6.04%；猪繁殖与呼吸综合征免疫抗体的平均阳性率由86.46%提升到88.11%,病原学样品的平均阳性率由15.80%下降到13.15%；猪圆环病毒2型病原学样品的平均阳性率由26.61%下降到22.28%；猪伪狂犬病gE抗体的平均阳性率由5.53%下降到4.51%,病原学样品的平均阳性率由6.43%下降到5.16%；猪流感感染抗体的平均阳性率由5.51%下降到5.30%,病原学样品的平均阳性率由637%下降到4.97%。生猪的死亡率总体趋于下降。15个猪场的总体平均死亡率由试验实施1～2月的8.28%下降到实施11～12月的7.24%,总体下降了1.04个百分点。种猪的繁殖性能和仔猪的存活率显着提高,仔猪的平均死亡率明显下降。其中,每头长白母猪年平均提供活仔数由20.73头提高到21.57头,提高了0.84头；仔猪的平均死亡率由8.54%下降到6.86%,下降了1.68个百分点。每头杜洛克母猪年平均提供活仔数由18.95头提高到19.23头,提高了0.28头；仔猪的平均死亡率由7.44%下降到6.55%,下降了0.89个百分点。每头大约克母猪年平均提供活仔数由19.97头提高到20.54头,提高了0.57头；仔猪的平均死亡率由7.42%下降到6.39%,下降了1.03个百分点。仔猪的生长性能大幅度提高。其中,长白仔猪达到30kg和100kg的平均日龄分别提前了2.1天和3.3天,30～100kg平均日增重提高了30.1g,保育猪和育肥猪的料肉比分别降低了0.063和0.098。杜洛克仔猪达到30kg和100kg的平均日龄分别提前了2.1天和3.9天,30～100kg平均日增重提高了24.6g,保育猪和育肥猪的料肉比分别降低了0.029和0.089。大约克仔猪达到30kg和100kg的平均日龄分别提前了1.9天和3.6天,30～100kg平均日增重提高了21.5g,保育猪和育肥猪的料肉比分别降低了0.023和0.056。2009年5月至2010年6月,采取上述综合措施后,15个规模猪场的主要疫病防控效果显着,生猪发病减少了,死亡率降低了,猪群的免疫抗体水平、种猪的繁殖性能、仔猪的死亡率和生长性能等各项指标均发生了明显改善,取得了良好的经济效益和社会效益。
高林[6]（2005）在《猪病诊治问答》文中研究表明1秋冬季节如何防治猪病毒性腹泻? 猪病毒性腹泻是猪传染性胃肠炎（TGE）、猪流行性腹泻（PED）和猪轮状病毒（RTV）感染等由病毒引起的以水样腹泻为主的急性传染病的统称。此类传染病虽然病原和流行规律不同,但其临床症状、病理变化和致病机理相似,养猪现场
李子亨[7]（2021）在《胸膜肺炎放线杆菌SDHG-1的分离鉴定及致病性研究》文中指出猪传染性胸膜肺炎（porcine contagious pleuropneumonia,PCP）是由胸膜肺炎放线杆菌（Actinobacillus pleuropneumoniae,APP）引起的一种高度接触传染性、致死性呼吸道传染病。各年龄、性别的猪对本病均易感,以急性出血性纤维素肺炎和慢性纤维素性坏死性胸膜炎为主要特征。近年来PCP单独感染病例较少见,常与其它病原混合感染并引起猪呼吸道综合症（PRDC）,并且由于APP不同血清型间交叉保护效果不理想,进一步增加了该病的防治难度。此外,该病在许多养猪国家流行,已成为世界性工业化养猪的五大疫病之一,严重影响养猪业的发展,造成了巨大的经济损失。APP新型菌株的分离鉴定、生物学特性研究及全基因组序列分析不仅丰富APP病原学和基因组学资料,还为APP疫苗的开发提供理论基础。本研究从一患有呼吸道疾病的病死猪肺脏中分离到一株疑似APP,经培养特性观察、生化鉴定和分子生物学鉴定该分离株为血清12型APP,命名为SDHG-1。进一步通过生长曲线测定、PAM的粘附侵袭能力测定和表面多糖PGA合成基因转录水平的检测明确该分离株的主要生物学特性,并通过全基因组测序及比较基因组学方法揭示SDHG-1的基因组序列特点,最后检测了SDHG-1对小鼠和仔猪的致病性及其免疫原性。结果显示,SDHG-1是一株具有特殊培养特性的APP,平板“拉丝”实验呈阳性,对链霉素、磷霉素、头孢曲松钠、氟苯尼考、恩诺沙星和头孢他啶高度敏感。生物学特性结果显示,SDHG-1在BHI液体培养基中培养4h-8h间（OD600≈0.3-1.5）菌液浓度Y与菌液OD600值呈极显着相关,回归方程为:Y（CFU/m L）=5×1011×OD6.1396。SDHG-1细胞外基质多糖PGA合成基因pga A和pga C的转录水平均显着高于非粘性菌株APP L20;并且SDHG-1对PAM的粘附和侵袭能力均强于APP L20。基因组测序结果显示SDHG-1基因组共有2,322,048bp,GC含量为41.22%,共编码2172个基因。在基因组中段通过水平转移获得一个四环素耐药基因岛,并通过与APP L20的毒力基因差异分析发现SDHG-1病变诱导相关毒力因子占比最多,而L20株占比最大的为营养获取相关毒力因子,这可能为传统血清型强毒株与新发毒株的毒力差异提供新的思路。另外SDHG-1对小鼠和仔猪均有致病性:小鼠感染后呼吸困难,被毛凌乱,厌食,精神沉郁,6h后死亡,肺脏严重淤血出血,根据寇式法则计算SDHG-1对小鼠的LD50为7.1×109CFU;感染72h后仔猪流鼻涕、气喘,剖检可见肺脏肉样病变,表面有典型的纤维素样渗出物。另外灭活SDHG-1可对1型APP感染小鼠产生40%的保护率,但对5b型APP感染不能提供有效的保护效力。综上所述,本研究成功分离到一株较粘的血清12型APP SDHG-1,表面PGA表达丰富,同时发现SDHG-1中插入了一段水平转移获得的四环素耐药基因岛;该菌对仔猪具有较强的致病性,灭活SDHG-1对自身感染提供较好的免疫效果同时对血清1型APP感染具有较好的交叉免疫保护效果,是一个潜在的疫苗候选株。
靳雄华[8]（2021）在《猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染》文中研究指明传染性胸膜炎和猪瘟是对养猪行业危害最大的两种传染病,一旦猪发生这两种疾病,会造成大面积传播与死亡,对农户造成巨大的经济损失,因此,研究传染性胸膜炎与猪瘟的预防与治理非常必要。本文对猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染进行了深入研究与分析,对两种疾病的发病特征、原因等进行了详细阐述,并提出一些鉴别与预防方法,希望可以起到一定的借鉴作用。
杨广文[9]（2020）在《猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染的诊断与防治》文中认为文章以猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染疾病的诊断与防治为研究对象,简单介绍了某规模养殖场猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染疾病的发病情况,分析了该疾病的临床症状与流行特点,对如何进行该疾病防治,提出了一些针对性的防治措施,以供参考。
梁娟[10]（2020）在《猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的建立与应用》文中进行了进一步梳理巴氏杆菌、猪链球菌、猪肺炎支原体、胸膜肺炎放线杆菌和副猪嗜血杆菌分别是引起猪巴氏杆菌病、猪链球菌病、猪支原体肺炎、猪传染性胸膜肺炎和格拉瑟氏病的主要病原,也是当前养猪业常见的五种呼吸系统疾病病原菌。这五种病原菌均可引起猪的呼吸道疾病,且引起的临床症状和病理变化通过肉眼观察有时难以区分。有时还存在这几种病原菌混合感染的情况,更给疾病的诊断造成困难。为了有效鉴定这些病原菌,本课题拟建立一种同时鉴定这五种病原的PCR诊断方法。1.猪呼吸系统病原菌单重PCR检测方法的建立目的:建立猪呼吸系统病原菌的单重PCR检测方法。方法:针对巴氏杆菌plpE基因、猪链球菌gdh基因、猪肺炎支原体mhp677基因、胸膜肺炎放线杆菌apxⅣ基因和副猪嗜血杆菌vanY基因序列各设计1对引物,确定每种病原单重PCR的退火温度和敏感性,验证引物的特异性。结果:确定五种病原单重PCR扩增的退火温度范围为54℃-60℃,每对引物均为相应病原菌特异的引物。plpE基因的最低检出限为0.01 ng/μL,gdh基因的最低检出限为0.1 ng/μL,mhp677基因的最检出限为0.1 ng/μL,apxⅣ基因的最低检出限为0.1 ng/μL,vanY基因的最低检出限为1 ng/μL。结论:建立了五种病原各自的单重PCR检测方法,为五重PCR检测方法的建立奠定了基础。2.猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的建立目的:建立猪呼吸系统病原菌的五重PCR检测方法。方法:将确定的5种病原菌单重PCR检测方法的引物和模板混合,确定五重PCR反应的退火温度和和敏感性,验证引物的特异性。结果:五重PCR反应的退火温度为60℃,每对引物均为相应病原菌特异的引物。在五重反应PCR体系中,plpE基因的最低检出限为1 ng/μL,gdh基因的最低检出限为10 ng/μL,mhp677基因的最低检出限为1 ng/μL,apxⅣ基因的最低检出限为10 ng/μL,vanY基因的最低检出限为10ng/μL。结论:建立了猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法。3.猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的应用目的:验证所建立的五重PCR方法是否可用于临床检测。方法:采集病变猪肺组织,提取基因组后用已经建立的方法检测五种巴氏杆菌、猪链球菌、猪肺炎支原体、胸膜肺炎放线杆菌和副猪嗜血杆菌。结果:对采集的224份临床样本的检测结果表明,在65份样品中检测到上述五种病原中的至少一种,其中50份样品为单纯感染,15份为混合感染。结论:本研究所建立的猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法可用于猪呼吸系统病原菌巴氏杆菌、猪链球菌、猪肺炎支原体、胸膜肺炎放线杆菌和副猪嗜血杆菌的检测及病原流行病学调查。
二、猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治（论文提纲范文）
（1）PCV2、PRRSV、APP在生猪育肥期的共感染研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 综述 |
| 1.1 胸膜肺炎放线杆菌流行病学概况 |
| 1.1.1 胸膜肺炎放线杆菌时间分布 |
| 1.1.2 胸膜肺炎放线杆菌地理分布 |
| 1.1.3 胸膜肺炎放线杆菌群体间分布 |
| 1.2 PRRSV、PCV2与APP混合感染调查 |
| 1.2.1 PRRSV与 APP混合感染的危害 |
| 1.2.2 PCV2、APP混合感染的危害 |
| 1.2.3 PRRSV、PCV2与APP混合感染的危害 |
| 1.3 APP防控研究进展 |
| 1.3.1 疫苗的研究进展 |
| 1.3.2 APP的耐药性调查 |
| 1.3.3 环境因素的影响 |
| 1.4 研究的目的及意义 |
| 第二章 猪传染性胸膜肺炎ApxⅣ间接ELISA方法的初步建立及应用 |
| 2.1 材料 |
| 2.1.1 包被蛋白、阴性和阳性血清 |
| 2.1.2 主要耗材与试剂 |
| 2.1.3 主要仪器 |
| 2.2 方法 |
| 2.2.1 ApxⅣN-2 间接ELISA方法建立及条件优化 |
| 2.2.2 特异性试验 |
| 2.2.3 敏感性试验 |
| 2.2.4 重复性试验 |
| 2.2.5 APP-ApxⅣ间接ELISA方法对临床血清应用 |
| 2.3 结果 |
| 2.3.1 ApxⅣN-2 间接ELISA方法建立及条件优化 |
| 2.3.2 特异性试验 |
| 2.3.3 敏感性试验 |
| 2.3.4 重复性试验 |
| 2.3.5 APP-ApxⅣ间接ELISA检测方法对临床血清应用 |
| 2.4 分析讨论 |
| 第三章 PRRSV、PCV-2与APP在生猪育肥期的共感染调查 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 实验猪场及血清 |
| 3.1.2 主要材料与试剂 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 A场基本生产、免疫背景、发病信息调查 |
| 3.2.2 B场基本生产、免疫背景、发病信息调查 |
| 3.2.3 C场基本生产、免疫背景、发病信息调查 |
| 3.2.4 D场基本生产、免疫背景、发病信息调查 |
| 3.2.5 E场基本生产、免疫背景、发病信息调查 |
| 3.3 结果 |
| 3.3.1 A场各阶段血清学调查 |
| 3.3.2 B场各阶段血清学调查 |
| 3.3.3 C场各阶段行病学调查 |
| 3.3.4 D场各阶段血清学调查 |
| 3.3.5 E场各阶段血清学调查 |
| 3.4 分析讨论 |
| 第四章 加强PCV2 疫苗免疫对PCV2、PRRSV、APP在育肥期共感染的影响初探 |
| 4.1 材料 |
| 4.1.1 试验猪场及血清 |
| 4.1.2 主要材料 |
| 4.2 方法 |
| 4.2.1 B场免疫背景 |
| 4.2.2 试验猪的批次、分群 |
| 4.2.3 猪群管理 |
| 4.3 结果 |
| 4.3.1 A45 组多免疫一次PCV2 疫苗对共感染的影响 |
| 4.3.2 A60 组多免疫一次PCV2 疫苗对共感染的影响 |
| 4.4 分析与讨论 |
| 全文总结 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
| 作者简历 |
（2）猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治（论文提纲范文）
| 1 猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染现状 |
| 2 临床症状 |
| 3 剖检变化 |
| 4 病情诊断 |
| 5 综合防治技术 |
| 5.1 净化养殖环境, 及时消毒隔离 |
| 5.2 及时接种疫苗 |
| 5.3 药物治疗 |
| 6 结语 |
（3）猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的病症介绍（论文提纲范文）
| 1 概述 |
| 2 猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的病症表现 |
| 2.1 临床表现 |
| 2.2 病理表现 |
| 2.3 病理诊断表现 |
| 3 猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染症的应急处理措施 |
（4）猪高热病的诊断与防治（论文提纲范文）
| 1 流行特点 |
| 2 临床症状 |
| 3 剖检变化 |
| 4 预防措施 |
| 5 治疗方案 |
（5）广西395个规模猪场猪呼吸道疾病综合征的病原学调查及防控措施（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1 猪呼吸道疾病综合征概述 |
| 2 PRDC的主要病原 |
| 2.1 猪繁殖与呼吸综合征病毒 |
| 2.2 猪瘟病毒 |
| 2.3 猪圆环病毒 |
| 2.4 猪伪狂犬病毒 |
| 2.5 猪流感病毒 |
| 2.6 猪传染性胸膜肺炎放线杆菌 |
| 2.7 猪细小病毒 |
| 2.8 猪链球菌 |
| 2.9 产毒素多杀性巴氏杆菌和支气管败血波氏杆菌 |
| 2.10 副猪嗜血杆菌 |
| 2.11 猪附红细胞体 |
| 3 研究的目的意义 |
| 第二章 PRDC的病原学检测 |
| 1 材料 |
| 1.1 被检材料 |
| 1.2 主要试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 1.4 细菌分离鉴定培养基 |
| 1.5 PCR检测引物 |
| 1.6 PRDC病原学检测技术路线 |
| 2 方法 |
| 2.1 样品和流行病学资料的收集及临床初步诊断 |
| 2.2 病原学检测 |
| 3 结果 |
| 3.1 样品和流行病学资料的收集及临床初步诊断 |
| 3.2 病原学检测 |
| 4 讨论 |
| 4.1 PRDC致病性特征 |
| 4.2 引发PRDC的主要病原分析 |
| 5 小结 |
| 第三章 PRDC病例病理组织学观察 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 病理组织材料的采集 |
| 1.2 主要试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 1.4 病理组织切片制作 |
| 2 结果 |
| 2.1 肺脏 |
| 2.2 脾脏 |
| 2.3 肝脏 |
| 2.4 肾脏 |
| 2.5 淋巴结 |
| 2.6 心肌 |
| 3 讨论 |
| 4 小结 |
| 第四章 PRDC的防控措施 |
| 1 材料 |
| 1.1 实验时间和地点 |
| 1.2 被检材料 |
| 1.3 主要试剂 |
| 2 方法 |
| 2.1 综合防控技术方案 |
| 2.2 PRDC主要原发性病原的控制净化技术要点 |
| 3 结果 |
| 4 讨论 |
| 5 小结 |
| 第五章 全文结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 |
（7）胸膜肺炎放线杆菌SDHG-1的分离鉴定及致病性研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| abstract |
| 英文缩略词 |
| 引言 |
| 第一篇 文献综述 |
| 1.1 猪传染性胸膜肺炎病原学及流行病学 |
| 1.2 APP的毒力因子与致病机理 |
| 1.3 猪传染性胸膜肺炎的防治措施 |
| 1.4 基因组学研究进展 |
| 1.4.1 基因组测序技术的研究进展 |
| 1.4.2 基因组测序技术的应用 |
| 1.5 APP基因组学研究进展 |
| 第二篇 研究内容 |
| 第一章 SDHG-1 的分离鉴定及生物学特性研究 |
| 1.1 材料 |
| 1.1.1 病料来源、菌株及细胞 |
| 1.1.2 主要试剂及仪器 |
| 1.1.3 主要试剂的配置 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 SDHG-1 的分离培养 |
| 1.2.2 SDHG-1 的生化鉴定 |
| 1.2.3 SDHG-1的PCR鉴定 |
| 1.2.4 SDHG-1 的血清型鉴定 |
| 1.2.5 SDHG-1 的药敏试验 |
| 1.2.6 SDHG-1 生长曲线的测定 |
| 1.2.7 SDHG-1 和 L20中PGA合成相关基因pga A、pga C、rpo E和 hns的转录水平检测 |
| 1.2.8 APP SDHG-1和L20对PAM的粘附和侵袭试验 |
| 1.2.9 统计学分析 |
| 1.3 结果 |
| 1.3.1 SDHG-1 的分离鉴定结果 |
| 1.3.2 SDHG-1 的药物敏感性试验 |
| 1.3.3 SDHG-1 生长曲线的测定结果 |
| 1.3.4 SDHG-1 细胞外基质多糖(PGA)合成基因的转录水平结果 |
| 1.3.5 APP SDHG-1和L20对PAM的粘附和侵袭试验结果 |
| 1.4 讨论 |
| 1.5 小结 |
| 第二章 SDHG-1 的全基因组测序及比较基因组学分析 |
| 2.1 材料 |
| 2.1.1 实验试剂及仪器 |
| 2.1.2 菌株登录号 |
| 2.2 方法 |
| 2.2.1 SDHG-1基因组DNA的提取 |
| 2.2.2 基因组测序及数据质控 |
| 2.2.3 基因组组分分析 |
| 2.2.4 基因组功能注释 |
| 2.2.5 比较基因组学研究 |
| 2.3 结果 |
| 2.3.1 SDHG-1 全基因组序列的质控与组装结果 |
| 2.3.2 SDHG-1 全基因组的一般特征 |
| 2.3.3 SDHG-1 基因组功能注释结果 |
| 2.3.4 SDHG-1 比较基因组学分析结果 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 小结 |
| 第三章 SDHG-1 的致病性和免疫原性研究 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 菌株 |
| 3.1.2 实验动物 |
| 3.1.3 实验试剂及仪器 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 小鼠致病性检测 |
| 3.2.2 仔猪致病性检测 |
| 3.2.3 SDHG-1 的免疫原性检测 |
| 3.2.4 统计学分析 |
| 3.3 结果 |
| 3.3.1 小鼠致病性分析 |
| 3.3.2 仔猪致病性分析 |
| 3.3.3 SDHG-1 的免疫原性检测结果 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 导师简介 |
| 作者简介 |
| 攻读硕士期间学术成果 |
| 致谢 |
（9）猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染的诊断与防治（论文提纲范文）
| 1 发病情况分析 |
| 2 临床症状与流行特点分析 |
| 3 剖检分析 |
| 4 实验室诊断分析 |
| 5 猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染的防治措施分析 |
（10）猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的建立与应用（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 英文缩写 |
| 第1章 文献综述 |
| 1.1 猪链球菌研究进展 |
| 1.1.1 病原学 |
| 1.1.2 流行病学 |
| 1.1.3 毒力因子 |
| 1.2 副猪嗜血杆菌研究进展 |
| 1.2.1 病原学 |
| 1.2.2 流行病学 |
| 1.2.3 毒力因子 |
| 1.3 巴氏杆菌研究进展 |
| 1.3.1 病原学 |
| 1.3.2 流行病学 |
| 1.3.3 毒力因子 |
| 1.4 胸膜肺炎放线杆菌研究进展 |
| 1.4.1 病原学 |
| 1.4.2 流行病学 |
| 1.4.3 毒力因子 |
| 1.5 猪肺炎支原体研究进展 |
| 1.5.1 病原学 |
| 1.5.2 流行病学 |
| 1.5.3 毒力因子 |
| 1.6 实验室检测技术 |
| 1.6.1 血清学方法 |
| 1.6.2 分子生物学方法 |
| 1.6.3 多重PCR检测方法 |
| 1.6.4 实时荧光定量PCR检测方法 |
| 1.6.5 微滴数字PCR定量检测方法 |
| 1.7 本研究的目的及意义 |
| 第2章 引言 |
| 第3章 猪呼吸系统病原菌单重PCR检测方法的建立 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 菌株、毒株 |
| 3.1.2 主要试剂 |
| 3.1.3 相关试剂的配制 |
| 3.1.4 主要仪器与设备 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 菌株培养 |
| 3.2.2 细菌、病毒基因组的提取 |
| 3.2.3 反转录 |
| 3.2.4 核酸浓度的测定 |
| 3.2.5 引物设计与合成 |
| 3.2.6 单重PCR退火温度的确定 |
| 3.2.7 单重PCR反应的特异性检验 |
| 3.2.8 单重PCR引物敏感性检验 |
| 3.3 结果 |
| 3.3.1 单重PCR退火温度的确定 |
| 3.3.2 单重PCR反应中引物特异性检验 |
| 3.3.3 单重PCR反应的敏感性检验 |
| 3.4 讨论 |
| 第4章 猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的建立 |
| 4.1 材料 |
| 4.1.1 菌种、毒株 |
| 4.1.2 主要试剂 |
| 4.1.3 相关试剂的配制 |
| 4.1.4 主要仪器与设备 |
| 4.2 方法 |
| 4.2.1 五重PCR退火温度确定 |
| 4.2.2 五重PCR引物特异性检验 |
| 4.2.3 五重PCR反应敏感性检验 |
| 4.3 结果 |
| 4.3.1 五重PCR反应退火温度的确定 |
| 4.3.2 五重PCR反应特异性检验 |
| 4.3.3 五重PCR敏感性检验 |
| 4.4 讨论 |
| 第5章 猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的应用 |
| 5.1 材料 |
| 5.1.1 菌种 |
| 5.1.2 主要试剂 |
| 5.1.3 相关试剂的配制 |
| 5.1.4 主要仪器与设备 |
| 5.2 方法 |
| 5.2.1 样品采集 |
| 5.2.2 基因组的提取 |
| 5.2.3 临床样品中猪呼吸系统病原菌的五重PCR检测 |
| 5.3 结果 |
| 5.4 讨论 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
四、猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治（论文参考文献）
- [1]PCV2、PRRSV、APP在生猪育肥期的共感染研究[D]. 李兴海. 湖南农业大学, 2019(08)
- [2]猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治[J]. 王艳. 江西农业, 2018(02)
- [3]猪瘟与猪传染性胸膜肺炎混合感染的病症介绍[J]. 韦堂康,谢家卫. 农业开发与装备, 2013(05)
- [4]猪高热病的诊断与防治[J]. 刘丽萍,王守君,单艳君,朱永信,张玲,张谦. 养殖技术顾问, 2011(04)
- [5]广西395个规模猪场猪呼吸道疾病综合征的病原学调查及防控措施[D]. 刘翠权. 南京农业大学, 2011(06)
- [6]猪病诊治问答[A]. 高林. 2005辽宁省畜牧兽医学会养猪研究会学术年会论文集, 2005
- [7]胸膜肺炎放线杆菌SDHG-1的分离鉴定及致病性研究[D]. 李子亨. 吉林大学, 2021(01)
- [8]猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染[J]. 靳雄华. 中国畜禽种业, 2021(02)
- [9]猪传染性胸膜炎与猪瘟混合感染的诊断与防治[J]. 杨广文. 甘肃畜牧兽医, 2020(04)
- [10]猪呼吸系统病原菌五重PCR检测方法的建立与应用[D]. 梁娟. 西南大学, 2020(01)
标签：仔猪论文; 猪传染性胸膜肺炎论文; 猪瘟论文; 基因合成论文; 胸膜论文;